从各种不同来源样品，如细菌、酵母、血液、动物组织、动物细胞、植物组织和植物细胞中提取高纯度的基因组DNA。提取的基因组DNA片段50-150 kb。用户可根据需要选用不同的抽提溶液来进行不同样品的抽提。
◆ 文库构建
◆ 基因图谱
◆ Southern-Blotting
◆ PCR
可处理样品
血液/组织/培养细胞/鼠尾/酵母/细菌（革兰氏阴性和一些革兰氏阳性菌）。
使用样品
最好使用新鲜的样品或取样后立即在-20℃或-70℃冷冻的，不应使用多次冻融的样品，因为这会导致提取的DNA片段较小且提取量也下降。对于具有较难处理细胞壁的细菌或酵母菌，应在对数生长期早期收集菌体。
基因组提取试剂盒使用注意事项：
处理样品的最大量
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动物组织
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30mg
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小鼠尾
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0.6-1.2cm
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大鼠尾
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0.6cm
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培养细胞
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5X106
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细菌
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2X109
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酵母
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5X107
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对一些DNA含量较大的组织，如脾脏，应使用小量最大样品量的用量。
如果所使用的样品未在表列出，建议先使用最大使用量的一半，检测提取情况。
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以下数据可作为估计样品用量的参考表1-1
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Multiwell
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Plates培养面积cm2
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细胞数
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96-well
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0.32
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4-5X104
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48-well
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1
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1X105
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24-well
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2
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2.5X105
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12-well
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4
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5X105
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6-well
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9.5
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1X106
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Dishes
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Plates培养面积cm2
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细胞数
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Φ35mm
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8
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1X106
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Φ60mm
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21
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2.5X106
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Φ100mm
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56
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7X106
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Φ145-150mm
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145
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2X107
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Flasks
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Plates培养面积cm2
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细胞数
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40-50ml
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25
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3X106
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250-300ml
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75
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1X107
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650-750ml
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162-175
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2X107
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动物组织
多数动物组织每2mm2重约10-15mg。
动物细胞
Hela细胞在不同培养皿中得率见表1-1（Hela细胞约长15nm左右，各种细胞大小不同，得率也有不同。
细菌和酵母
细菌和酵母的生长情况通常用分光光度计来检测，但很难给出确定的细胞数和OD值的对应关系来，细胞密度受很多因素影响，如菌株种类，摇速等。不同菌株在特定的波长处显现出不同的吸收值（如600或436nm）。检测OD值时，应使OD值在0.05到0.3之间，如果数值超过0.3，则应该稀释样品。
下面的数值可作为粗略的估计：大肠杆菌培养物1X109 cells/ml，1:4稀释.
OD600值使用Beckman DU-7400检测时为0.25，使用Beckman DU-40检测时为0.125。
Proteinase K: 试剂盒中提供的Proteinase K 浓度为10mg/ml。
样品直接用Proteinase K处理即可，不必用机械外力打碎，但动物组织应先切成小块。
RNA污染
使用本系列试剂盒提取基因组DNA的同时，如果样品中有RNA，也会同时提取出来，尤其肝，肾等RNA含量高的组织，提取的RNA较多。RNA存在不会影响PCR的进行，但有可能影响后面的一些酶切或其它实验。如果需要提取不含RNA的基因组DNA，可在实验过程中加入RNaseA，加入量不要超过20μl，具体操作见说明书。
基因组DNA的洗脱
对不多于10μg DNA，用100μl洗脱缓冲液洗脱一次即可。超过10μg，建议洗脱两次，大约第一次可洗脱60-80%。如果多于30μg建议用3X100μl洗3次，会提高回收量。如果DNA量较少（如少于1μgDNA），只用50μl 洗脱一次即可，如果要使用去离子水溶解DNA，请确定水的PH值不低于7，但如果需要长期保存，仍然建议使用洗脱缓冲液，因为用水保存的DNA有可能会发生酸解。
预计得率
◇动物组织：每毫克组织0.2-1.2μg DNA
◇鼠尾：10-40μg DNA（根据种类，年龄和鼠尾长度不同而不同。）
◇哺乳动物细胞：每个细胞6pg DNA（6μg/106 cells）
纯度检测
DNA纯度可用分光光度计检测，DNA在260nm处有光吸收值。检测时应使OD值在0.15到1.0之间，数值比较准确。样品稀释要适当：例如，25-50ng/ml DNA（A260=0.5-1.0）的样品不应使用超过4倍体积的水稀释。可以检测260nm处的吸收值，也可以在220-330nm之间进行扫描。（扫描可以检测是否有其它因素影响OD260，如在325nm处有吸光值说明有污染物或比色皿不干净。）A 260为1（1cm 夹缝）相当于50μg DNA。
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